Рейтинг@Mail.ru Rambler's Top100 Hosting Ukraine
Как организовать организацию организации ??
⇑ На верх ⇑

Калькулятор кормов

Расчитывает суточную норму кормления индеек в зависимости от температуры в птичнике, сырого протеина, обменной энергии, живой массы, суточного привеса и яйцепродукции за формулой Ивка-Мельника.

Подробнее...

Новости технологий

Ученые и специалисты ветеринарной медицины Университета Аубурн, США создали экспертную систему по диагностике заболеваний птицы
Справочная система по диагностике заболеваний птицы

Подробнее

 

В Нидерландах создали робота для сбора куриных яиц. Робот Poultry Bot также выполняет дополнительные функции мониторинга микроклимата.

Робот PoultryBot для сбора яиц



Межведомственный сборник научных трудов "Птицеводство"

Последний 72-й номер межведомственного научно-производственного сборника "Птицеводство"

Подробнее

 

Мясояичние куры Геркулес и индейки кросса Харьковский 56

 

Продуктивность индеек кросса Харьковсковский 56

 

 

Бреславец В.А., Стегний Б.Т.

ННЦ «Институт экспериментальной и клинической ветеринарной медицины» НААН

Резюме. Викладено матеріали щодо санітарно-гігіенічної обстановки в період роботи інкубаторію та шляхи зниження ембріональної загибелі птиці від патогенів і покращення санітарного стану навколишнього середовища.

Ключові слова: інкубаторій, рівень бактеріального забруднення обладнання, дезобробка яєць, інкубаторів, припливного та відпрацьованого повітря.

Summary. Оf presented materials related to sanitary conditions in the hatchery peroiod his work and ways to reduce bird deaths embrionalnoy from pathogens, improve environmental health

Key words. Hatchery, the level of bacterial contamination of equipment, dezinfection eggs, incubators, supply and exhaust air


От санитарно-гигиенического состояния инкубатория зависят не только показатели выводимости яиц и жизнеспособности выведеного молодняка, но и состояние здоровья обслуживающего инкубаторий персонала, жителей близлежащей его территории (особенно в зонах размещения районных инкубаторных станций), а также эпизоотологическое благополучие расположенных в близи птицеводческих или животноводческих ферм.

Известно, что динамика микробиологической контаминации помещений и оборудования инкубатория на протяжении всего периода инкубации претерпевает значительных изменений. В частности, на 10-16-е сутки инкубации количество микроорганизмов-контаминантов в воздушном пространстве инкубатория повышается на 45-60 %. Особенно высокий уровень бактериального загрязнения наблюдается в случае одновременной инкубации в одном зале яиц кур и водоплавающей птицы [8].

Работа инкубатория в напряженном режиме приводит к повышению уровня микроорганизмов-контаминантов в 2-З раза. При этом, особенно в выводном зале, происходит значительное накопление граммположительной кокковой микрофлоры, а в дальнейшем - граммотрицательной. Чаще всего это - St. aureus, Pseudomonas auruginosa, Е. соli, Salm. pullorum, Salm. gallinarum, Proteus vulgaris, Аspergillus fumigatus, Аspergillus flavus [8].

Несмотря на проведение дезобработки яиц перед началом инкубации, часть патогенных микроорганизмов в условиях инкубационного шкафа выживает. В связи с этим в неблагополучных хозяйствах инфицированный молодняк нередко появляется уже на выводе. Далее микроорганизмы с молодняком и тарой попадают в птичник, а с выбрасываемым из инкубатория воздухом - в окружающую среду [5].

Предупреждение заболеваний птицы начинается с создания идеальной санитарно-ветеринарной обстановки в племенных хозяйствах, поставляющих инкубационные яйца, и непосредственно в цехах инкубации [6]. Этому способствует наиболее благоприятное географическое расположение птицеферм и инкубатория (чем дальше друг от друга, тем лучше), правильное расположение цехов с учетом направления ветра, соблюдение однонаправленного конвейерного потока, а также хорошая расстановка оборудования. Кроме этого требуется строгое соблюдение всех принципов технологии и организации производства: если упущено хотя бы одно звено, выпуск доброкачественного молодняка будет затруднен или вовсе невозможен.

Вывод здорового молодняка зависит от очень многих факторов. За одни из них отвечает поставщик инкубационного яйца, а за другие - инкубаторий. Если птицеферма поставила грязное, инфицированное, с тонкой скорлупой яйцо, то в инкубатории возможно лишь незначительно улучшить микробиологическое качество. По мнению Кожемяки Н. (2010) «биологическая безопасность производства»- это меры направленные на предотвращение или сведение к минимуму проникновение в эмбрион микроорганизмов (вирусов, бактерий, грибов), простейших, паразитов, а также инфицирование птенцов насекомыми, грызунами и дикими птицами, то есть предупреждение как возможности возникновения заболевания, так и его последствий [6].

С целью снижения распространения аэрогенных инфекций и заболеваемости, повышения сохранности и продуктивности животных и птицы, улучшения условий труда обслуживающего персонала, а также охраны окружающей среды от загрязнения вредными аэрозолями технологических помещений птицефабрик Байдукин Ю.А. с соавт. предлагают использовать двухзонные электрофильтры мощностью около 600 м3 в час [1]. Они позволяют значительно снизить общую запылённость воздуха в помещении для сортировки выведенного молодняка. Использование двух установок снижает общую запыленность воздуха более, чем в 3 раза. Однако, по мнению авторов, содержание пыли в воздухе выводного зала инкубатория по сравнению с воздухом внешней среды остается еще достаточно высоким.

В условиях производства важно не только выявить те недостатки технологического процесса, которые позволили возбудителю инфекции проникнуть в инкубаторий и вызвать заболевание как эмбрионов, так и выведенного молодняка, но и разработать меры, препятствующие его проникновению.

Перед началом работы инкубатория видовой и количественный состав микроорганизмов в воздухе, на поверхности стен и оборудования практически одинаков. В период работы данного предприятия качественный и количественный состав микрофлоры претерпевает значительные изменения. Так, бактериальными обследованиями проб воздуха инкубатория и его поверхностей (пол, стены, оборудование) установлено значительное его загрязнение микроорганизмами (2874 тысяч МТ (микробных тел) в 1 м3 воздуха) в зимний период. Весной их уровень в воздухе помещений инкубатория снижается почти в 10 раз по сравнению с зимним периодом и колеблется в пределах от 205630 до 308400 МТ/м3. Летом их концентрация в воздухе несколько повышается и достигает 590200 МТ/м3, наименьшее содержание отмечается в октябре ( 34200-46799 МТ/м3), [3].

В опытах Маркова Ю. и др. количество микроорганизмов в воздухе выводных шкафов повышалось при увеличении количества выведенного молодняка, достигая максимума в конце вывода. Так, через 4 часа инкубации количество микроорганизмов в воздухе выводного шкафа увеличивалось в 2,5 раза, через 6 ч. - в 3,2, через 8 ч. - в 5,2, в конце вывода - в 7,2 раза [7].

В наших опытах в воздухе инкубационного зала, в сравнении с выводным, среднее количество микробных тел колебалось в пределах 5,6-14,6 КОЕ/м [9]. После перекладки яиц на вывод существенно изменяется видовой и количественный состав микроорганизмов. Минимальное число колоний (77,3-106 КОЕ/м3) зарегистрировано перед началом наклёва скорлупы. К моменту выборки молодняка их число увеличивалось до 105,3-140 КОЕ/м3. В выводных шкафах, кроме Coryneobacterium spp., выделены Staphylococcus haemolyticus, Enterobacter amnigenes и Enterobacter gergoviae. При этом в опытной и контрольной группах в основном превалировали Staphylococcus haemolyticus, Coryneobacterium spp., Enterobacter gergoviae, грибковая микрофлора. Перед выборкой молодняка в опытной группе зафиксировано более высокое содержание микрофлоры (140,0 ± 26,6 КОЕ/м3), что связано с наличием в контрольной группе (105,3 ± 6,2 КОЕ/м3) ванночек с постоянно испаряющимся формалином. Однако результаты инкубации позволили с высокой достоверностью установить влияние препарата «Полидез», используемого в опытной группе для обработки яиц перед инкубацией, на показатели выводимости и эмбриональной жизнеспособности птицы. Так, в период инкубации (на 11-е сутки развития) из контрольной группы удалено около 1,8 % яиц (тумаки), пораженных микроорганизмами, а в опытной группе – всего 3 шт. (0,03 %). Выводимость яиц в опытной группе составляла 86,6 %, в контроле – на 1,1 % меньше за счет повышенной гибели зародышей от поражения микроорганизмами [9].

Интенсификация производства привела к концентрации на ограниченных площадях большого количества разновозрастной птицы. Несоблюдение элементарных зооветеринарных требований при производстве яиц и мяса птицы привело к тому, что в настоящее время почти ни одно хозяйство в нашей стране не имеет птицы относительно свободной от патогенов. Это связано с тем, что воздушный бассейн любого птицеводческого предприятия сильно загрязнен микрофлорой, опасной не только для здоровья птицы, но и обслуживающего ее персонала. Почти на всех птицеводческих предприятиях при проведении различных операций не соблюдаются чистые и грязные потоки. Возможность перезаражения птицы велика из-за отсутствия у близлежащих помещений очистки всасываемого и выбрасываемого из них воздуха, а также вследствие закладки на инкубацию яиц как от здоровой, так заболевшей птицы.

Существующие в настоящее время санитарно-ветеринарные меры защиты зачастую не дают желаемого результата и как следствие - невысокие воспроизводительные качества родительских стад. Однако одной из главных причин повышенной эмбриональной смертности птицы является заражение яиц патогенной микрофлорой.

Производством промышленных инкубаторов Украина не занимается. За последние 25 лет появлялись лишь отдельные публикации, посвященные совершенствованию технологии инкубирования яиц с-х птицы. В используемых в настоящее время инкубаторах (производитель «Пятигорсксельмаш») заложены технологические приемы и режимы, испытанные на давно уже не существующей птице. Инкубаторы У-45, 50, 55 рассчитаны на инкубацию яиц кур средней массы 50-58 г, закладку в шкаф небольшого количества яиц, т.е. из расчета наличия в инкубаторе нескольких партий.

Перевод птицеводства на крупномасштабное производство, требующего посадки на выращивание крупных партий молодняка, выявил несовершенство инкубаторов типа "Универсал". В случае одноразовой полной загрузки шкафа наблюдается кислородное голодание у эмбрионов вследствие низкого уровня воздухообмена, отсутствует система охлаждения яиц и т.д. При закладке на инкубацию более крупных по размеру яиц уменьшается зазор между лотками, а это снижает воздухообмен между яйцом и средой, уменьшается возможность снятия излишков тепла и углекислоты, выделяемых эмбрионом, особенно во второй половине инкубации. Учитывая это, промышленность России начала выпускать на базе «У-55» модернизированные инкубаторы ИУП-Ф-45 и ИУВ-Ф-15. Однако они не соответствует современным требованиям науки и техники. У давно эксплуатируемых инкубаторов не решены вопросы перехода от барабанного типа укладки лотков к тележкам, а также отсутствуют системы: автоматического регулирования и регистрации режима инкубирования с учетом возраста зародышей, обеззараживания среды внутри шкафа и воздуха, поступающего в инкубаторий или удаляемого из него.

Крупномаштабное производство требует учета многих вышеназванных вопросов в том числе и санитарно-гигиенических, так как риск контаминации птицы и ее продукции очень велик. В связи с этим нами разработана система бактериологической очистки поступающего в помещение и удаляемого из него воздуха с использованием бактерицидных аппаратов, в которых используется синергидный эффект (совместное действие ультрафиолетового излучения и озона). Параллельная работа УФ-излучателя и устройства по выработке озона способствует увеличению в несколько десятков раз бактерицидного эффекта при относительно слабой мощности УФ-излучателя и концентрации озона. Гибель бактерий происходит в основном за счет необратимых повреждений их ДНК. По бактерицидности озон в 300 раз превышает хлор и нейтрализует патогенные свойства микроорганизмов воздуха, воды, на различных поверхностях, исключает длительное отрицательное последействие на людей и животных. При этом не возникает проблемы удаления и утилизации отработанных веществ [10].

Установка создает активную циркуляцию воздуха в радиусе до 15 метров. Проходящий через нее воздух облучается и стерилизуется УФ-облучением, источником которого являются ртутные лампы. При этом воздух обогащается озоном, который образуется (в озон преобразуется менее 0,001 % кислорода) в озонаторе. Уникальная конструкция и небольшая мощность озонатора обеспечивают экономичный режим работы и не создают для здоровья персонала опасной концентрации озона. Циркуляция озона исключает образование воздушных необработанных зон и поверхностей не только в открытом пространстве помещения, но и в труднодоступных полостях, обеззараживание которых идет проникающим в них обработанным воздухом.

Противомикробную активность аппарата «Уфотек» в отношении условно-патогенных кокков, бактерий, патогенных дрожжеподобных и плесневых грибов изучено в институте им. И.И.Мечникова. В данном случае суточные культуры антибиотикорезистентных штаммов микроорганизмов родов Staphylococcus, Pseudomonas, Escherichia, Candida и Aspergillius, выращенных на твердых питательных средах, подвергались воздействию аппарата «Уфотек» на расстоянии 1,5 м в трех режимах: 1-й режим – «УФ - облучение»; 2-й – «Озон»; 3-й – «УФ-облучение + Озон». Результаты исследований показали, что использование в помещениях установок «Уфотек» на протяжении 1 часа при температуре 18-24 0С в режиме комбинированного облучения- ультрафиолетового и озонового, мощностью 1,7 Вт и 12 Вт, соответственно, снижает бактерицидный эффект с 99 до 60 % в случае увеличения объёмов помещения с 53 до 100 м3 (табл. 1).

Таблица 1. Время 100%-го бактерицидного эффекта, минут

Тест-культура

Способ обработки

УФ-облучение

Озон

УФ-облучение +

Озон

Staphylococcus aureus

25

60

10

Pseudomonas aeruginosa

20

60

10

Escherichia coli

15

50

10

Candida albicans

15

45

5

Aspergillius fumigatus

15

45

5

 

Испытание действия бактерицидных аппаратов «Уфотек» проведено также и в условиях птицефабрики на площадке по выращиванию цыплят. В одном из птичников установили бактерицидные аппараты, а другой птичник был в качестве контрольного. Аппараты работали одновременно УФ-облучение + Озон в автоматическом режиме: 15 минут работают, 30 минут - отключены. Установлено, что аппараты «Уфотек» снижают бактериальную загрязненность помещений для выращивания молодняка птицы в 2- 3 раза (с 182-192 до 65-87 тыс. МТ в 1 м3 воздуха помещения).

Бактерицидная эффективность установки «Уфотек» зависит от ее мощности, объема или площади обрабатываемого воздуха или поверхности. Так, нами установлено, что при включении в работу одной УФ-лампы и одного озонатора уровень обеззараживания тест-культур в зависимости от скорости движения воздуха в воздуховоде (от 1,5 до 15 м/сек) колеблется в пределах: Escherihia coli K99 от 100 до 99,75 %, Staphylococcus aureus 209 – от 97,25 до 50,2 %, Saccharomyces cervisiae 80 – от 99,9 до 98,5 %. Увеличение количества озонаторов с 1-го до 2-х повышает эффективность обеззараживания воздуха почти на 70 % в сравнении с первым вариантом. При использовании 2-х УФ ламп и 3- 4-х озонаторов эффективность дезобработки воздуха дополнительно повышается еще на 25 % и составляет для тест – культуры Escherihia coli K99- от 100 до 99,8 %, штама Staphylococcus aureus 209 – от 99,8 до 99,5 %, Saccharomyces cervisiae 80 от 100 до 99,6 %.

Исходя из вышеизложенного, можно заключить, что использование УФ-облучателя в комплексе с озонатором для обработки воздуха, подаваемого в инкубаторий или в птицеводческие помещения, а также удаляемого из них, особенно находящихся в зоне птицеводческих объектов или жилых массивов (районные инкубаторные станции), позволяет улучшить санитарное состояние окружающей среды, повысить эмбриональную жизнеспособность птицы и качество выведенного молодняка.

Из-за отсутствия необходимых данных, касающихся изучения отдаленного влияния дезинфектантов на иммунный статус, живую массу и сохранность птицы в процессе выращивания, ощущается недостаточная обоснованность используемых дезсредств для дезобработки яиц [1, 2].

Так, при организации работы по мойке и дезинфекции яиц необходимо учитывать, что из различных методов самый вредный - погружение инкубационного яйца в воду, так называемое мытье в «бактериологическом супе». При чистке скорлупы влажными щетками повреждается кутикула и возникает реальная возможность бактериального загрязнения, поскольку влажные щетки без распылителей, смыв бактерии с одного яйца, могут перенести их на другие. Применение только дезинфицирующего раствора при помощи распылителей не может быть эффективным без предварительной очистки скорлупы от микробного (фекального или белкового) загрязнения [6]. В качестве альтернативного метода Кожемяка Н. предлагает применять непрерывное мытье, обработку и просушку при помощи специальных устройств, когда яйца, уложенные в пластиковые лотки, на тележках ввозят в моечное помещение (камеру), где движется распылитель с дезинфицирующим раствором и есть система полоскания и немедленной сушки скорлупы [6]. Одна, две или три тележки с яйцом могут быть помыты сразу в зависимости от размера мойки (минута уходит на загрузку, три — на мытье и дезинфекцию, одна — на полоскание и сушку теплым воздухом, одной минуты достаточно для вывоза тележек). После такой обработки яйца на скорлупе практически нет бактерий. При данном методе обработки яиц значительно снижается микробная загрязненность воздуха как помещений, так и окружающкей среды.

Для предупреждения повторного обсеменения эмбрионов микроорганизмами и контроля за качеством дезинфекции один раз в месяц или чаще следует проводить бактериологический контроль воздуха (смыв с яйца, со стен, с оборудования производственных помещений). Дезинфекция признается удовлетворительной, если в исследованных пробах нет роста микробов.

С целью контроля эпизоотического благополучия из выведенной партии, после ее зачистки, следует постоянно отбирать слабый молодняк, направив его в ветеринарную лабораторию для исследования на наличие патогено (колибактериоз, сальмонеллез, псевдомоноз, грибы и т.п.). Кроме этого, ежегодно проводить санацию инкубатоория (не позже, чем через 351 сутки после предыдущей). Продолжительность проведення санации между днём заключительной дезинфекции и первой закладкой яиц после санации должна быть не менее 14 дней [4]. Для каждого помещения инкубатория должна быть разработана инструкция и график уборки и санации. Сроки уборок и дезинфекций представлены в табл. 2.

Контроль качества санации помещений и оборудования инкубатория следует проводить согласно установленного графика, но не ранее, чем через сутки после проведения последней дезобработки.

Вакцинация in оvо на сегодня в многих странах мира с развитым птицеводством (США, Изриль, Германия, и др.) является стандартной процедурой для инкубаториев, применяющих иммунизацию птицы против инфекционных болезней (ньюкаслской болезни, Марека, Гамборо, инфекционного бронхита и др.). Компания Embrex (США) начала развивать систему технологии этого процесса в конце 1980-х годов. Приблизительно 85 % (9.1 млрд.) инкубационных яиц в этой стране ежегодно прививаются с использованием системы Inovoject.

Системы установлены в более, чем 30 странах Европы, Латинской Америки, Австралии, Северной Америки, Азии. Лабораторная концепция «вакцинации в яйцо» была усовершенствована и превратилась в практически применяемую технологическую платформу, которая позволяет одновременно вводить в час несколько антигенов более, чем в 50 000 яиц. Техника in оvо основана на глубоком знании физиологии формирования иммунитета, а также точной оценки степени восприимчивости эмбрионов к такой технологии [11].

Таблица 2. Сроки проведения санаций помещений и оборудования инкубатория

Помещение

Сроки проведениясанаций

Метод обработки

 Комната приема яиц  В конце рабочего дня
  • Очистка, мойка гарячей (60-90) оС водой или одним из растворов (3%-ным раствором «демпа», 10%-ным гарячим раствором кальцинированной соды, 3-5% - ными растворами «дезмола», «ксилонафта».
  • Применяют также влажную или аэрозольную дезинфекцию, используя дезинфицирующие средства согласно наставлений по применению (не имеющие отрицательного влияния на инкубационные яйца и дальнейшую длительную эксплуатацию инкубационных и выводных машин, оборудования, помещений) за исключением формалина.
  • Допускается последовательное применение дезинфектантов, например, первый раз - раствор «виркона С», следующий раз – «полидеза», «бактерицида», «септадора» или др.
 Яйцесклад  - « -
 Комната сортировки и укладки яиц в лоток  - « -
 Инкубационный зал  Уборка ежедневно, санация один раз в неделю
 Инкубационные шкафы  После каждой партии яиц, отправленной на вывод
 Комната перекладки яиц у выводные лотки  После каждой партии яиц, перенесенной у выводные лотки
 Выводной зал Один раз в течение (3-7) суток (уборка ежедневно)
 Выводной шкаф  После каждого вывода молодняка
 Комната обработки молодняка  После каждой обработанной партии молодняка
 Комната отправки молодняка  После каждой отправленной партии молодняка
 Инкубационные и выводные лотки, ящики  После каждого использования
 Автотранспорт  После каждого транспортирования  яиц, молодняка и обязательно перед транспортированием молодняка
 

Физической проблемой при инъекции является создание аккуратного отверстия в необходимом месте без разрушения скорлупы, поэтому игла для прокалывания должна иметь специальный срез. Скорлупа сама по себе также может быть источником микробной контаминации в процессе инъекции. Иглы для прокалывания не должны проникать в полость эмбриона, поскольку риск того, что этим самим будет переноситься микрофлора, достаточно высокий. Поэтому иглы для прокалывания должны быть тщательно продезинфицированы между инъекциями. При повышенной загрязненности яиц и наличия тумаков может понадобиться перед проведением инъекций тщательная обработка поверхности скорлупы.

Конструкция «игла в игле», разработана для системы in оvо, состоит из внешней иголки для прокалывания скорлупы и внутренней маленькой иглы для инъекций в амнион или эмбрион. Использование двух игл способствует минимизации отрицательного действия на скорлупу и эмбрион, а также повышает эффективность санитарной обработки. Однако в случае наличия «тумаков» прокол скорлупы неизбежно приводит к «взрыву» яиц и инфицированию как яиц всего лотка, так и аппаратуры инъектора. В связи с этим перед подачей лотков с яйцом на вакцинацию нами разработана автоматическая система удаления яиц с мертвыми зародышами. Это дает возможность снизить риск распространения инфекционного начала и уменьшить расход вакцинного материала на вакцинацию неоплодотворенных яиц и яиц с мертвыми зародышами. Данная система позволит в период проведения in оvо вакцинации на вывод переносить яйца только с живыми зародышами, что значительно снижает бактериальную загрязненность выводного шкафа, выведенного молодняка и удаляемого из помещений отработанного воздуха.

По результатам анализа представленных материалов, можно заключить, что в целях повышения эмбриональной жизнеспособности птицы, получения здорового кондиционного молодняка, улучшения санитарного состояния окружающей инкубаторий среды целесообразно применять:

  • дезобработку поверхности скорлупы яиц кур сразу после их снесения в птичнике на ленте транспортера с помощью УФ-облучателя, озонатора и дополнительно один раз в месяц проводить уборку и дезобработку гнезд 0,2%-ным раствором препарата полидез, а в случае отсутствия ленточного сбора дезобработку яиц всех видов птицы сразу после их сбора 0,1-0,2%-ным раствором полидез, что обеспечить высокий бактерицидный эффект в период их инкубации;
  • дезинфекцию яиц после закладки на инкубацию 0,05-0,1%-ным раствором препарата полидез, который сохраняет бактерицидный эффект в течение всего периода инкубации;
  • комплекс физических и химических средств обеззараживания помещений, оборудования, инвентаря в период санации птицеводческих объектов;
  • озонирование и УФ-облучение поступающего в помещения инкубатория и удаляемого из них воздуха, что будет способствовать снижению распространения патогенных микроорганизмов внутри объекта и в окружающей его среде;
  • постоянный поиск экологически безопасных и одновременно высокоэффективных антисептиков-дезинфектантов, которые можно было бы применять на птицеводческих предприятиях в присутствии обслуживающего персонала, животных и птицы, используя для этой цели различные технологические схемы;
  • при проведении in оvо вакцинации автоматическую систему удаления яиц с мертвыми зародышами, позволяющую снизить риск распространения инфекционного начала и уменьшить расход вакцинного материала на вакцинацию неоплодотворенных яиц и яиц с мертвыми зародышами.

Список литературы

  1. Байдукин Ю.А., Першин А.Ф., Журавлев М.И. Исследования запыленности воздуха в инкубатории птице фабрики и очистки его электрофильтрами // Науч. –техн. Бюл. По электрификации сельского хозяйства, 1985, Т. 1. № 53, - с. 44-48.)
  2. Безрукавая И.Ю., Дорошко И.Н., Прокудин А.Ф. Ветеринарно-санитарная оценка птичников различной вместимости и изучение бактериальной загрязненности атмосферного воздуха птице фабрик// Сб. «Птицеводство», вып.. 20.К., «Урожай», 1975.- С. 67-71
  3. Бернашвили Л.Р. Санитарно- гигиеническое состояние воздушной среды инкубатория птице фабрики // Материалы юбилейной научной конференции, посвященной 50-летию со дня основания Грузинского зоотехническо-ветеринарного учебно-исследовательского института.-1982.-С.121-124.
  4. Бреславець В. та ін. Вимоги щодо технологічного процесу санації інкубаторію/ Ветеринарна медицина: мiжвiд. темат. наук. зб., 2011.- Вып. 95.- С. 15-18.
  5. Кожемьяка Н. Дезинфекция инкубационных яиц //Птицеводство.- 1996.- № 1.- С.26-27.
  6. Кожемяка Н. Противоэпизоотические мероприятия в инкубатории "Животноводство России", октябрь 2010, Источник: www.webpticeprom.ru
  7. Марков Ю., Свириденко В., Заика С. Динамика накопления микрофлоры в инкубационных шкафах // Птицеводство.- 1984.- № 6.- С. 32.
  8. Стегній Б., Калин П., Безрукава І., Бреславець В., Дикий І., Стегній М.// Щодо мікрофлори інкубаторів // Ветеринарна медицина України.- 2000, № 9.- С. 20.
  9. Стегний Б.Т, Бреславец В.А, Калын П.С, Дунаев Ю.К., Титарчук В.П. Дезобработка воздуха, подаваемого в помещения или удаляемого из них, - путь к снижению эмбриональной смертности и повышению выводимости молодняка, обеспечению благополучия птицехозяйства / Вісник Сумського національного аграрного університету. - 2008.- Вип. 5.- С. 121–134.
  10. Стегній Б.Т., Бреславец В.А., Калин П.С.Дезобработка воздуха, подаваемого в помещения или удаляемого из них,- путь к снижению эмбриональной смертности и повышению выводимости молодняка, обеспечению благополучия хазяйства // Вісник Сумського національного аграрного університету. - 2008.- Випуск 5.- С. 121 – 134.
  11. Стегній Б.Т., Бреславець В.О., Драгуть С.С., Стегній А. Вивчення ефективності in ovo вакцинації проти ньюкаслської хвороби та інфекційного бронхіту курей / Ін-т. біології тварин. – Львів, 2010. – Т.-12, № 2, С.426-430.

Перепечатка материалов без ссылки на наш сайт запрещена!

 

 

Украинское отделение ВНАП

Сегодня ВНАП – наибольшая международная общественная птицеводческая организация, представленная в 70 странах мира и насчитывает больше чем
7 000 членов >>>


Архив видео и фотоматериалов конференций по птицеводству, организованных Институтом птицеводства Национальной академии аграрных наук и проводимых в г. Алушта >>>


 

 

Птица для птиусадебных хозяйств

Птица селекции Института птицеводства НААН для приусадебных и фермерских хозяйств >>>


Все для птицеводов

В интернет-магазине "ДЛЯ ПТИЦЕВОДОВ" предлагаются рекомендации для организации эффективного фермерского и приусадебного хозяйства: брошюры, книги и другие товары >>>


 

Разработана компьютеризиро-ванная модель повышения экономической эффективности птицеводческого предприятия.
В качестве критериев оптимизации модели выбран общую массу прибыли за год и рентабельность производства. В случае предприятия по выращиванию мясо-яичной птицы конечным результатом такой план производства, который обеспечит максимально-возможные экстремумы выбранных критериев. >>>